>> CURSOS OFRECIDOS PARA EL PRIMER SEMESTRE 2020




"EQUIPAMIENTO MEDICO"

Docente a cargo:  Mg. Claudia BONELL (FIUNER)

Acreditable a la Especialización en Ingeniería Clínica 
                        
Contenidos mínimos:

Introducción: Descripción y clasificación de las áreas de diagnóstico y tratamiento del ámbito hospitalario. Problemática específica. Descripción del equipamiento asociado.

Área Quirúrgica y de Cuidados Críticos: Áreas de urgencias, cirugía, cuidados críticos, etc. Niveles de complejidad. Equipamiento asociado.

 Áreas de apoyo a la Práctica Médica: Esterilización. Normas básicas para la desinfección y esterilización. Principios de funcionamiento de una Central de Esterilización. Métodos y Sistemas de Esterilización. Ventajas y limitaciones. Métodos de control del proceso de esterilización. Normativa vigente.

Hemodiálisis. Principios de funcionamiento. Equipamiento. Infraestructura e instalaciones.

Diagnóstico por Imágenes y Terapia Radiante: Áreas de: RX, RNM, Ecografía y Medicina nuclear. Equipamiento asociado. Principios de funcionamiento. Normativa.

 Inicio: semana del 02 de marzo, (actividad en el Campus Virtual de la FIUNER

 Días y Horarios de dictado presencial: viernes de 15:00 a 20:00 y sábados de 09:00 a 13:00 (una vez al mes). 

 Duración: 60 horas totales.

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Acceso al Campus Virtual 



"MICROSCOPIA DE FLUORESCENCIA IN VIVO Y PROCESAMIENTO DE IMÁGENES TRIDIMENSIONALES"

Docente a cargo:  Dra. Valeria SIGOT (FI-UNER)

Acreditable a la Maestría en Ingeniería Biomédica 
                        
Contenidos mínimos:

Sistemas biológicos bajo el microscopio: 
Microscopía óptica de cultivos celulares y organismos modelos animales. Criterios y requisitos para la adquisición de imágenes in vivoein vitro. Ventajas del pez cebra (Daniorerio) como organismo modelo para microscopía de fluorescencia. Conceptos básicos sobre desarrollo embrionario del pez cebra y morfogénesis epitelial. Especímenes gruesos, ventajas y limitaciones para adquisición de imágenes in vivo. Modelo murino para el análisis de criptas de colon. Monitoreo de bacterias. 
Procesos biológicos observables al microscopio, de nano-  a micro-escala, ej.de desarrollo embrionario, formación de biofilms bacterianos, interacción ligando-receptor, transporte vesicular.

 Microscopía de fluorescencia:
Componentes de un microscopio de fluorescencia, sistemas de iluminación y de detección. 
Concepto de función de dispersión de punto (psf, point spread function) y uso de esferas fluorescentes nanométricas para su determinación experimental.
Introducción a tipos de microscopios y técnicas para microscopía 4D. Cámaras de montaje y orientación de embriones.
Fluoróforos  orgánicos e inorgánicos, proteínas transgénicas fluorescentes, proteínas foto-convertibles..Incubación con marcadores fluorescentes y técnicas de microinyección de ADN y ARN. Aplicaciones para monitoreo de partículas y células. 
Diseño experimental y consideraciones para implementar rutinas de microscopía in vivo en embriones completos.

 Procesamiento de imágenes y análisis estadístico: 
Formación y restauración de imágenes en microscopia de fluorescencia multidimensional. Desconvolución digital. 
Introducción al procesamiento digital de imágenes empleando software libre (FIJI). Métodos automáticos de segmentación y monitoreo de partículas/células. 
Métodos estadísticos y gráficos para analizar datos de microscopía.

 Inicio:  09 de marzo de 2020 

 Días y Horarios: lunes, martes y jueves de 09:00 a 15:00 

 Duración: 90 horas totales.

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